Approfondissement des compétences en cytologie

• Validation et Interprétation spécialisée des hémogrammes adressés au laboratoire d’onco-hématologie (patients des services cliniques d’hématologie adulte et d’immuno-hématologie pédiatrique)
• Encadrement des techniciens pour la lecture des frottis sanguins
• Discussion des indications des examens de cytologie spécialisée (myélogramme et ponction ganglionnaire essentiellement et les NFS de l’hématologie clinique) avec les cliniciens,
• Réalisation des prélèvements de myélogramme et adénogrammes chez les patients adultes
• Lecture et interprétation des examens de cytologie spécialisée : myélogramme et adénogramme, colorations de Perls, frottis sanguins.
• Communication avec les services cliniques pour la transmission des résultats
• Evaluation des analyses complémentaires (immunophénotypage, analyses moléculaires, Caryotype/FISH) à réaliser si besoin sur les prélèvements de moelle afin d’orienter et de préciser le diagnostic

Ces activités sont encadrées par un biologiste senior (AHU, PH, MCU-PH ou PU-PH) qui supervise
quotidiennement l’ensemble de l’activité de cytologie spécialisée du jour.

Analyse et interprétation des résultats de cytométrie de flux pour le dépistage et la caractérisation des hémopahies malignes

• Connaissance et indications des différents panels d’immunophénotypage en fonction des contextes cliniques et des suspicions diagnostiques
• Confrontation des résultats de cytologie spécialisée et des résultats d’immunophénotypage afin de proposer des hypothèses diagnostiques ou d’évaluer le suivi d’une hémopathie

Les conclusions des dossiers d’immunophénotypage sont préparées par les internes puis revues une fois par semaine de manière collégiale avec les techniciens et les biologistes seniors du secteur cellulaire (AHU, PH, MCU-PH, PU) avant validation de la conclusion définitive.

Initiation à l’interprétation des analyses moléculaires réalisées pour le diagnostic ou le suivi des hémopathies malignes : clonalité, chimérisme, évaluation de la maladie résiduelle par immunogénétique, caractérisation de mutations somatiques à visée diagnostique, pronostic ou théranostique par NGS

Les internes participent, selon leur profiles et orientation, aux réunions de présentation et d’interprétation des données moléculaires, en particulier du NGS lymphoide B, au cours desquelles les résultats de ces analyses sont discutés par les biologistes senior du secteur moléculaire (AHU, AS, PHU, MCU-PH) avant validation définitive.

Participation aux RCP cliniques (1/semaine), « clinico-moléculaires » (1/mois) et cytologie spécialisé (1/mois) avec présentation à l’ensemble des participants des résultats par les internes

Présentation de cas-cliniques intégrant des données de cytologie spécialisée, de cytométrie de flux, de biologie moléculaire et d’histologie lors de staffs éducationnels pour les externes (2/mois)

Participation active à des séances de bibliographie (3 par mois) avec présentation synthétique en .ppt (30 min par papier) des principaux messages d’un article et critique éventuelle. Chaque interne présente dans 2 à 3 articles durant son stage lors de ces séances bibliographiques

Réalisation d’un projet de recherche, dans le secteur de cytométrie ou moléculaire permettant de s’initier aux techniques, et d’organiser un plan de travail afin de répondre à une question ou une problématique, en lien avec la thématique du laboratoire.

Ce projet est encadré par l’un des biologistes senior du laboratoire et présenté en fin de semestre à l’ensemble de l’équipe lors des « lab meeting » de l’équipe de recherche (Institut Necker Enfants Malades UMR INSERM 1151 et CNRS8283, Eq 2 « Différentiation lymphoide normal et pathologique », dirigé par E. Macintyre et V. Asnafi.)

Participation à la permanence des soins avec réalisation de gardes biochimie/hématologie/bactériologie (environ 3/mois) au sein d’une équipe constituée d’un interne et de 3 TLM.

Aide à la réception des demandes d’analyses sur certaines tranches horaires, réalisation de certaines analyses techniques sur des tranches horaires définies, validation des résultats et communication avec les services de soins.

Un biologiste senior est d’astreinte pour chacune des disciplines.

Le service comporte 2 PU-PH (E. Macintyre et V. Asnafi), un MCU-PH (Ludovic Lhermitte), 2 AHU, un assistant spécialiste et 3 à 4 (InterCHU/clinicien) internes. Un ingénieur complète l’équipe d’encadrement médico-technique. Réalise 24 Millions B/BHN avec environ 1000 myélogrammes annuels, les NFS de la consultation d’hématologie et les NFS avec demande de diagnostic oncohématologique. 30% de l’activité est dans le secteur cellulaire et 70% secteur moléculaire.

Liste des publications du service (articles scientifiques, communications orales ou affichées lors de congrès) impliquant des internes (nom à souligner) 2013-2018

• Cheminant M, Derrieux C, Touzart A, Schmit S, Grenier A, Trinquand A, Delfau-Larue MH, Lhermitte L, Thieblemont C, Ribrag V, Cheze S, Sanhes L, Jardin F, Lefrère F, Delarue R, Hoster E, Dreyling M, Asnafi V, Hermine O, Macintyre E. Minimal residual disease monitoring by 8-color flow cytometry in mantle cell lymphoma: an EU- MCL and LYSA study. Haematologica. 2016 Mar;101(3):336-45. doi:10.3324/haematol.2015.134957. Epub 2015 Dec 24.
• Saillard C, Guermouche H, Derrieux C, Bruneau J, Frenzel L, Couronne L, Asnafi V, Macintyre E, Trinquand A, Lhermitte L, Molina T, Suarez F, Lemonnier F, Kosmider O, Delarue R, Hermine O, Cheminant M. Response to 5-azacytidine in a patient with TET2-mutated angioimmunoblastic T-cell lymphoma and chronic myelomonocytic leukaemia preceded by an EBV-positive large B-cell lymphoma. Hematol Oncol. 2017 Dec;35(4):864-868. doi: 10.1002/hon.2319. Epub 2016 Jun 29.
• Kim R, Lhermitte L. A « foamy » mastocytosis case. Blood. 2018 Feb 1;131(5):586. doi: 10.1182/blood-2017-08-803726.
• Dussiau C, Trinquand A, Lhermitte L, Latiri M, Simonin M, Cieslak A, Bedjaoui N, Villarèse P, Verhoeyen E, Dombret H, Ifrah N, Macintyre E, Asnafi V. Targeting IRAK1 in T-cell acute lymphoblastic leukemia. Oncotarget. 2015 Aug 7;6(22):18956-65. PubMed PMID: 26068967;
• Cheminant M, Bruneau J, Malamut G, Sibon D, Guegan N, van Gils T, Cording S, Trinquand A, Verkarre V, Lhermitte L, Brousse N, Jannot AS, Khater S, Frenzel L, Delarue R, Suarez F, Marçais A, Mulder CJ, Macintyre E, Asnafi V, Pouyet L, Bonnafous C, Lhospice F, Molina TJ, Meresse B, Cellier C, Cerf-Bensussan N, Hermine O; CELAC network°. NKp46 is a diagnostic biomarker and may be a therapeutic target in gastrointestinal T-cell lymphoproliferative diseases: a CELAC study. Gut. 2018 Nov 17. pii: gutjnl-2018-317371. [Epub ahead of print]
• Villarese P, Lours C, Trinquand A, Le Noir S, Belhocine M, Lhermitte L, Cieslak A, Tesio M, Petit A, LeLorch M, Spicuglia S, Ifrah N, Dombret H, Langerak AW, Boissel N, Macintyre E, Asnafi V. TCRα rearrangements identify a subgroup of NKL-deregulated adult T-ALLs associated with favorable outcome. Leukemia. 2018 Jan;32(1):61-71.
• Gressier M, Chaquin M, Lhermitte L, Asnafi V, Macintyre E, Brouzes C. [Utility of 8-colours multiparameter flow cytometry immunophenotyping of plasma cells for the management of monoclonal gammopathy]. Ann Biol Clin (Paris). 2013 May-Jun;71(3):313-23. doi: 10.1684/abc.2013.0813. French.

Liste des thèses/mémoires de DES encadrés dans le service 2013-2018